細胞學堂 | 大鼠骨髓間充質干細胞的分離提取

更新時間：2024-02-19 | 點擊率：2140

骨髓間充質干細胞（bone marrow mesenchymal stem cells，BMSCs）來源于中胚層，是具有多分化潛能的細胞。細胞生物學表明，BMSCs具有較強的增殖能力和多向分化潛能。在不同誘導條件下，可向中胚層細胞如脂肪細胞、成骨細胞、肌細胞等分化。BMSCs 是理想的種子細胞來源之一，在細胞替代治療、基因治療及組織器官再造中具有重要的臨床應用價值。

本期細胞學堂為大家整理了大鼠骨髓間充質干細胞分離提取的方法、注意事項及鑒定指標，幫助您快速上手開展實驗。

分離提取步驟

骨髓取材

將大鼠斷頸處死后, 置于75%醫用酒精內浸泡5~10 min，消毒后將動物轉運至超凈工作臺內。無菌分離雙側股骨和脛骨，用新的剪刀鑷子清除股骨脛骨周圍肌肉組織；保持骨頭完整，留取純凈骨頭，將組織轉移至新的含有PBS的培養皿內，剪去骨干的兩端, 暴露骨髓腔；取注射器，吸取培養基，從骨頭一端插針，沖洗骨髓（至骨頭發白透亮），反復吹打制成單細胞懸液。

分離方法

BMSCs常見的分離方法有密度梯度離心法、貼壁法以及免疫磁珠分選法，大家可以根據自己實驗室條件來選擇合適的分離方法。

密度梯度離心法

將裝有大鼠骨髓液的15 mL離心管，1500 rpm離心5 min；棄上清，用完-全培養基重懸沉淀；將培養基重懸的細胞懸液緩慢滴加到Percoll分離液（用PBS稀釋）上方，形成密度梯度分離液；2000~2500 rpm離心25 min，吸取中間層的白色霧狀細胞層，加入PBS清洗細胞，1800 rpm離心5 min；棄上清，保留細胞沉淀；用細胞完-全培養基重懸沉淀，將細胞懸液按1×10⁶/mL密度接種于T25瓶中，于37℃，5%CO₂恒溫培養箱中靜置培養。首-次2 d換液，棄去未貼壁細胞, 此后每2~3 d換液一次；待細胞融合達80%后, 用胰酶消化1~2 min后傳代培養。

貼壁法

也稱全骨髓培養法或一步法。將收集的骨髓懸液經200目篩網過濾后，用完-全培養基制成單細胞懸液；培養48 h首-次換液，棄去未貼壁細胞；此后每2~3 d換液一次，觀察細胞的生長及融合程度，待細胞融合80%以上后開始傳代培養。

流式細胞儀或免疫磁珠分選法

免疫磁珠法和流式細胞儀分選法通過識別細胞表面特異性抗原分離細胞，可獲得純度較高的細胞，但對細胞的活性影響較大，獲得的細胞量少，需要特殊的儀器，實際應用受限。

注意事項

取材嚴格無菌操作。除基本的無菌要求外, 在剪取大鼠的雙下肢及剝離皮毛后，應更換取材器械，避免取材和分離骨髓間的交叉污染；

培養基營養要充足。血清濃度可摸索調整，培養時可額外添加生長因子；

采用密度梯度離心法時， Percoll分離液最好是現配現用。此外，分離液和細胞懸液的比例應合適，一般采用 1∶1；

注意細胞接種密度、換液時間。密度過低會影響細胞貼壁、融合。不同的操作方法中換液、傳代時間各異，根據細胞生長狀況及時調整換液、傳代時間。

鑒定指標

細胞形態學觀察

剛分離提純的原代細胞形態呈圓形，大小不一，漂浮于培養液中（圖1）。經純化貼壁后可見，細胞呈成纖維樣緊密排列，漩渦樣生長，胞核大、清晰、呈長梭形，細胞形態趨于統一（圖2），其形態符合BMSCs 的貼壁形態。